① 高温变性:双链DNA模板经过高温(95℃左右)加热一定时间(10~30s)后,双螺旋的氢键断裂而变性解链变成单链DNA,成为合成DNA的活性模板。
② 低温退火:将温度降至55到60摄氏度之间,使得引物与模板DNA单链按碱基互补配对的原则结合,形成局部双链;
③ 适温延伸:再将温度调至72℃左右(DNA聚合酶最适反应温度),DNA模板和引物结合物可被DNA聚合酶识别,并在Taq DNA聚合酶的作用下,以dNTP为原料,从引物的3′端开始以从5′→3′端的方向延伸,合成一条新的与模板 DNA 链互补的DNA链。
在经历一次变性→退火→延伸的流程之后,原本只有1条的DNA双链变成了2条;2次之后是4条;以此类推,经过变性、退火和延伸重复若干个循环后,就能将待扩目的基因扩增放大几百万倍。
图2 PCR的基本原理
图3 PCR的流程步骤
TaqMan探针是最早用于定量的方法,也是临床检测中最常用的检测方法。Taqman探针是最为常用的一种水解探针,在探针的5’端存在一个荧光基团,通常为FAM,探针本身则为一段与目的基因互补的序列,在探针的3’端有一个荧光猝灭基团,根据荧光共振能量转移原理(Förster resonance energy transfer, FRET),当报告荧光基团(供体荧光分子)和猝灭荧光基团(受体荧光分子)激发光谱重叠且距离很近时(7-10nm),供体分子的激发可以诱发受体分子发荧光,而自身荧光减弱。所以PCR反应开始,探针游离于体系中完整存在时,报告荧光基团并不会发出荧光,当退火时,引物和探针结合于模板,在延伸阶段,聚合酶不断的合成新链,由于DNA聚合酶具有5’-3’核酸外切酶活性,到达探针时,DNA聚合酶就会将探针从模板上水解下来,报告荧光基团和猝灭荧光基团分开,释放荧光信号。由于探针和模板存在一对一的关系,所以在试验的精度和灵敏度上,探针法都要优于染料法。每扩增一条DNA,就形成一个荧光分子,PCR产物的形成与荧光分子的形成完全同步,PCR产物越多,荧光信号累积的越多,荧光强度越大。
②荧光染料法(SYBR Green):SYBR Green Ⅰ是荧光定量PCR中最常用的荧光染料,它能够与所有的双链DNA结合。在PCR反应体系中,加入SYBR Green Ⅰ,它就会在过程中与双链DNA结合,从而产生荧光信号。因此,反应中发出的全部荧光信号就会与反应中双链DNA的量呈正比,荧光强度也会随着产物的增加而增加。但是由于染料与双链DNA是非特异性结合,因此可能产生假阳性的结果。